送样方式：

可接收固定好的细胞/组织样品并附有详细送检要求的送样单。

①需要您提供的样品：收集细胞/组织取样（新鲜迅速取材），置于1.5ml离心管内，加入2.5%的戊二醛溶液（固定液加满离心管，使样品完全浸没在固定液中），可放置于4°C保存，请不要倒弃固定液，一般固定12h后可寄送（务必采用1.5ml离心管寄送）。

②打印填写完整的预约单、送样单和样品一起寄送。

具体取材及固定方法如下：

1. 对于细胞类，10⁶以上的细胞，用细胞刮刀刮下来（不要反复刮取，动作迅速一次性刮取下来），1500-3000转离心，5-10min，收集细胞于管底肉眼可见2-3粒大米状样品，如果细胞量很多，把细胞团块用细针尖挑成几个小团块，弃上清，沿管壁缓慢加入4℃预冷的固定液，然后放入4°C冰箱保存。

2. 对于组织类，新鲜取材，取材位置准确，组织大小尽量在1-2mm³，离体取材后请立即投入4℃预冷的固定液中，然后放入4°C冰箱固定保存（对于无法下沉的样品，一定要通过抽真空，让样品沉下去）。

3. 对于细菌类，吸取OD0.5-0.8的培养物，离心后弃培养基，收集菌体沉淀于管底黄豆大小，可以用PBS洗1-2次，弃掉上清液，沿管壁缓慢加入4℃预冷的固定液，然后放入4°C冰箱保存（固体培养的标本取样时尽可能把培养基削薄一点，块切小）。

该方法是常用方法，不一定适用所有样品，建议查阅文献选择最合适的方法！

*固定液的量请参考上图，加至箭头所示位置

下列操作由我们完成：

      倒掉固定液，用0.1M，pH7.0的磷酸缓冲液漂洗样品三次，每次15min；用1%的锇酸溶液固定样品1-2h；小心取出锇酸废液，用0.1M，pH7.0的磷酸缓冲液漂洗样品三次，每次15min；用梯度浓度（包括30%，50%，70%，80%，90%和95%五种浓度）的乙醇溶液对样品进行脱水处理，每种浓度处理15min，再用100%的乙醇处理20min；最后过度到纯丙酮处理20min。用包埋剂与丙酮的混合液（V/V=1/1）处理样品1h；用包埋剂与丙酮的混合液（V/V=3/1）处理样品3h；纯包埋剂处理样品过夜；将经过渗透处理的样品包埋起来，70℃加热过夜，即得到包埋好的样品。样品在超薄切片机中切片，获得70-90nm的切片，切片经柠檬酸铅溶液和醋酸双氧铀50%乙醇饱和溶液各染色5-10min，晾干后即可在透射电镜中观察。